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Journal of Neurology and Neuroscience

Parole chiave

SIDS; Me5; Hippocampus; Sleep phases; SIUDS; Ciuccio; SUDC

Introduzione

L’uso del ciuccio e il succhiare non nutritivo

Il succhiare non nutritivo è un normale comportamento fetale e neonatale. Ciucci (noto anche come manichini) sono stati utilizzati per soddisfare questo desiderio innato per oltre 2000 anni . Questi capezzoli finti possono lenire o calmare i bambini e sono utili anche durante le procedure mediche minori . Ad esempio, è stato dimostrato che la succhiatura del ciuccio riduce il pianto nei neonati sottoposti a venipuntura . In 1979, è stato postulato che l’uso del ciuccio potrebbe diminuire il rischio di sindrome di morte infantile improvvisa (SIDS) in un momento in cui SIDS è stato associato con apnea del sonno. Anche se questa relazione è stata smentita, ci sono prove forti e coerenti che un minor numero di bambini con SIDS usano un ciuccio durante il sonno notturno rispetto ai bambini di controllo abbinati all’età . I meccanismi in base ai quali i ciucci forniscono protezione contro la SIDS rimangono poco chiari, sebbene siano stati proposti due meccanismi. In primo luogo, la protezione può essere correlata agli effetti sul controllo autonomo . In secondo luogo, i ciucci possono aumentare l’eccitazione dal sonno .

Il Me5

L’oggetto della nostra ricerca è il nucleo trigeminale mesencefalico (Me5), una formazione nervosa unica nel sistema nervoso centrale (SNC) in quanto è l’unico sito di gangli intra-neurassiali. Cioè, contiene i corpi cellulari dei neuroni sensoriali afferenti primari. Questa stretta banda di cellule passa immediatamente accanto al grigio periaqueduttale (PAG) e si estende dal confine tra il pons Varolii e il mesencefalo al collicolo superiore (limite superiore del mesencefalo). Il suo limite inferiore è rostrale al nucleo trigeminale motore (Mo5). Accanto a Me5, un più medialmente e davanti al quarto ventricolo è il locus coeruleus, la principale fonte di fibre noradrenergiche nel sistema nervoso. Il LC e Me5 sono intimamente correlati nello sviluppo iniziale; il LC è importante nella differenziazione dei neuroni Me5 che sono necessari per una corretta funzione LC .

Il Me5 è completamente circondato dalla formazione reticolare (RF) e la sua porzione caudale è il suo nucleo costituito da piccole cellule ergiche di acido gamma-aminobutirrico fusiforme multipolare (GABA)che sono rostrali al Mo5 e che denotiamo come Me5c (porzione caudale del nucleo trigeminale mesencefalico) . Al contrario, la porzione rostrale si trova nel mesencefalo ed è composta da grandi cellule glutammatergiche pseudo-unipolari senza dendriti .

Le cellule Me5 hanno giunzioni gap che formano sinapsi somato-somatiche tra piccoli gruppi di neuroni . Ogni neurone è quasi interamente coperto da processi che si irradiano da due o più astrociti (di solito gli astrociti coprono più neuroni) . I rami periferici dei neuroni del nucleo trigemino mesencefalico innervano principalmente i meccanorecettori nel legamento parodontale. Questi recettori sono notevolmente sensibili al movimento dei muscoli dell’ascensore nella mascella; sono attivati da un semplice tocco dei denti, è necessaria solo una forza molto piccola (1N e 4N nei denti anteriori e nei denti posteriori, rispettivamente) . Inoltre, i meccanorecettori parodontali Me5 di maggio “sparano” in assenza di stimoli . I rami centrali vanno al nucleo trigeminale motore, all’area parvocellulare reticolare e al mesencefalo dorsolaterale RF (nucleo del rafe dorsale e nucleo dorsale laterale del tegmentum ) . Quando scendono attraverso il ponte di Varolio come “tratto di Probst”, attraversano il bulbo dorsolaterale a livello del nucleo dorsale del nervo vago, passano nel campo tegmentale laterale e terminano nel midollo spinale a livello del nucleo trigeminale caudato fino a C1/C3 . Passando attraverso i grandi neuroni del nucleo Probst, situati ventralmente al tratto solitario, raggiungono il nucleo ipoglosso, il nucleo sensoriale principale del trigemino e il nucleo caudato, il nucleo solitario e infine il nucleo sopra-trigemino . Le cellule nervose della RF del mesencefalo, in particolare quelle del DRN e LDT, sia direttamente che attraverso il talamo, inviano proiezioni aspecifiche diffuse all’intera corteccia e fanno parte del sistema di attivatore reticolare ascendente (ARAS). Il Me5 fornisce la segnalazione glutammatergica a Mo5 tramite i suoi grandi neuroni pseudo-unipolari e la segnalazione gabaergica dai suoi piccoli neuroni Me5c (Figura 1) .

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Figura 1 Struttura anatomica del mesencefalo.

Schemi di sonno infantile

Prima e subito dopo la nascita, il sonno è essenzialmente solo sonno rapido movimento oculare (REM), ma la durata del sonno non REM (NREM) aumenta rapidamente dal primo mese di vita. Infatti, il sonno infantile è più accuratamente caratterizzato come” stati comportamentali ” chiamati sonno tranquillo (QS, che corrisponde al sonno NREM), sonno attivo (AS, che corrisponde al sonno REM), sonno indefinito (IS) e veglia (W, attivo o silenzioso). Un neonato non distingue tra giorno e notte, e il ritmo del sonno del neonato di 25 ore è indipendente dall’ambiente e governato solo da bisogni interni come la fame e la sete.

Il sonno si verifica quando VLPO e MNPO dell’ipotalamo trasmettono GABA e galanina sui loro bersagli del tronco cerebrale, in particolare quelli nell’ARAS (DRN, LC, TMN, ecc.). Riduzione della produzione di acetilcolina, dopamina, istamina, serotonina e orexina e inibizione dei nuclei parasimpatici e LC, che fornisce noradrenalina ai neuroni spinali pregangliari simpatici.

L’ipotesi

Il bambino inizia a dormire, il che richiede che i nuclei VLPO e MNPO rilascino GABA al tronco cerebrale e all’ipotalamo.

Quando GABA raggiunge le sue cellule bersaglio, vengono inibite perché la differenza di potenziale di membrana è altamente negativa dopo l’ingresso di cloruro. Questa inibizione impedisce il rilascio di neurotrasmettitori e l’attività di proteine critiche (ad esempio trasportatore della dopamina o monoamino ossidasi). Di conseguenza, i risultati dell’autopsia dei bambini con SIDS probabilmente esibiranno i livelli carenti di queste proteine. La loro carenza è probabilmente un effetto della SIDS piuttosto che una causa. Ad un certo punto durante il sonno, quando il livello di GABA è aumentato e molte cellule sono inibite, viene attivato un meccanismo intrinseco del tronco cerebrale. Il Me5 è in gran parte composto da cellule pseudo-unipolari, ma la sua terminazione caudale (Me5c) è costituita da piccole cellule multipolari che sono tipicamente gabaergiche. Poiché si trovano proprio di fronte al Mo5, sono normalmente inibiti in condizioni di riposo. Quando il GABA liberato dall’ipotalamo inibisce le cellule di Me5c, l’inibizione di Me5 del Mo5 è sollevata. I muscoli masticatori si contraggono e i denti si toccano, il che attiva il Me5 e lo fa rilasciare glutammato sui nuclei ARAS, sui nuclei PAG e parasimpatici. Il risultato netto è l’attenuazione degli effetti inibitori del GABA. In queste condizioni, alcune cellule nervose muoiono e attivano le cellule gliali che rilasciano IL1 beta e prostaglandine che aumentano i livelli di sostanza P. Questi eventi sono probabilmente frequenti ma raramente terminano con un esito fatale; tuttavia, possono influenzare lo sviluppo infantile e forse portare a un’estrema debolezza del” sistema del tronco cerebrale”, con molti nuclei e cellule che non funzionano correttamente. In questo scenario, un bambino potrebbe avere un’alta “sensibilità” a numerosi fattori che normalmente non sono letali ma potrebbero diventarlo a causa della debolezza del sistema in quel momento (ad esempio QT lungo, infezioni banali, ecc.).

In questo contesto, ci aspetteremmo di trovare gliosi; leucomalacia; ipoplasia cerebrale; aumento dei livelli di sostanza P; e diminuzione dei livelli di serotonina, dopamina, acetilcolina, noradrenalina, istamina e livelli di orexina.

Un fattore importante è la posizione di sonno. In posizione prona, ogni respiro richiede un lavoro maggiore per ingrandire la gabbia toracica, che contiene la colonna vertebrale, i polmoni e il cuore. In un neonato, queste strutture pesano ~0,5 kg di 3-4 kg di peso totale. È simile a un maschio adulto di 80 kg che dorme sulla schiena con ~ 10 kg di peso sulla gabbia toracica. Quando il peso sul sistema respiratorio non è supportato da alcuni neurotrasmettitori, in particolare la serotonina, può verificarsi la morte. Il ciuccio è in grado di attivare il Me5, che quindi rilascia glutammato sui nuclei ARAS e sui suoi bersagli, prevenendo così l’eccesso di trasmissione gabaergica e la debolezza del tronco cerebrale.”

Conclusione

Il nostro modello di etio-patogenesi include molti aspetti coerenti con le caratteristiche della SIDS. In particolare, spiega perché l’uso ciuccio può prevenire SIDS. Evidenzia anche perché lo squilibrio della neurotrasmissione è particolarmente pericoloso durante il sonno. In particolare, può spiegare la maggior parte dei risultati dell’autopsia nell’ippocampo dei bambini con SIDS . Ciò è supportato da studi sugli animali in cui la lesioning bilaterale delle fibre Me5 ha portato a lesioni simili del giro dentato dell’ippocampo .

Ipotizziamo che le anomalie riscontrate nel cervello SIDS non siano il risultato della relazione intima tra Me5 e ippocampo; piuttosto, sono dovute ad alterazioni del sonno REM causate da disfunzione Me5 . Alla nascita, i neuroni devono rispondere ai loro bisogni attraverso la piena espressione dei geni appropriati, ma questo sistema può fallire, specialmente nel contesto di problemi ambientali come il fumo di sigaretta o dormire in posizione prona. Queste influenze rendono la respirazione più difficile e meno efficiente, reintroducendo l’anidride carbonica emessa o sfidando l’espansione della gabbia toracica. Ciò potrebbe impedire la maturazione di importanti strutture del mesencefalo e portare a SIDS.

Conflitto di interessi

Gli autori dichiarano che la ricerca è stata condotta in assenza di rapporti commerciali o finanziari che potrebbero essere interpretati come un potenziale conflitto di interessi.

Dichiarazione etica

Lo studio presentato nel manoscritto non coinvolge soggetti umani o animali.

  1. Levin S (1971) Manichini. S Afr Med J 45: 237-240.
  2. Zempsky WT, Cravero JP (2004) American Academy of Pediatrics Committee on Pediatric Emergency Medicine and Section on Anestesiology and Pain Medicine. Sollievo del dolore e dell’ansia nei pazienti pediatrici nei sistemi medici di emergenza. Pediatria 114: 1348-1356.
  3. Curtis SJ, Jou H, Ali S, Vandermeer B, Klassen T (2007) Uno studio randomizzato controllato di saccarosio e/o ciuccio come analgesia per i bambini che ricevono la venipuntura in un pronto soccorso pediatrico. BMC Pediatr 7: 27.
  4. Cozzi F, Albani R, Cardi E (1979) Una comune patofisiologia per la morte improvvisa in culla e l’apnea del sonno. “La sindrome da vuoto-glosso-ptosi”. MedHypotheses 5: 329-338.
  5. Yiallourou SR, Poole H, Prathivadi P, Odoi A, Wong FY, et al. (2014) Gli effetti dell’uso di manichino/ciuccio sulla pressione sanguigna infantile e sull’attività autonomica durante il sonno. Med Sonno 15: 1508-1516.
  6. Franco P, Scaillet S, Wermenbol V, Valente F, Groswasser J, et al. (2000) L’influenza di un ciuccio sull’eccitazione dei bambini dal sonno. J Pediatr 136: 775-779.
  7. Hanzer M, Zotter H, Sauseng W, Pfurtscheller K, Müller W, et al. (2009) L’uso del ciuccio non altera la frequenza o la durata delle arousals spontanee nei neonati addormentati. Med Sonno 10: 464-470.
  8. Espana A, Clotman F (2012) I fattori one cut controllano lo sviluppo del locus coeruleus e del nucleo trigeminale mesencefalico. Cellula Mol Neurosci 50: 93-102.
  9. Morgane PJ, Jacobs MS (1979) Raphe proiezioni al locus coeruleus nel ratto. Cervello Res Toro 4: 519-534.
  10. Hayar A, Poulter MO, Pelkey K, Feltz P, Marshall KC (1997) Risposte mesencefaliche del neurone trigeminale all’acido gamma-aminobutirrico. Cervello Res 753: 120 -127.
  11. Copray JC, Liem RS (1993) Sopravvivenza e formazione di neuriti dei neuroni trigeminali mesencefalici del ratto in vitro. Arch Oral Biol 38: 547-557.
  12. Rokx JT, Juch PJ, Van Willigen JD (1985) Sull’innervazione bilaterale dei muscoli masticatori: uno studio con traccianti retrogradi. Giovanni 140: 237-243.
  13. Paik SK, Kwak MK, Ahn DK, Kim YK, Kim DS, et al. (2000) Ultrastruttura degli afferenti del fuso muscolare della mascella all’interno del nucleo mesencefalico trigeminale del ratto. Neuroreport 16: 1561-1564.
  14. Lazarov NE (2000) Il nucleo trigeminale mesencefalico nel gatto. Adv Anat Embryol Cell Biol 153: 1-103.
  15. Henderson G, Pepper CM, Shefner SA (1982) Proprietà elettrofisiologiche dei neuroni contenuti nel locus coeruleus e nel nucleo mesencefalico del nervo trigemino in vitro. Scad Cervello Res 45: 29-37.
  16. Curti S, Hoge G, Nagy JI, Pereda AE (2012) La sinergia tra accoppiamento elettrico e proprietà della membrana promuove una forte sincronizzazione dei neuroni del nucleo trigeminale mesencefalico. J Neurosci 32: 4341-4359.
  17. Liem RS, Copray JC, Van Willigen JD (1991) Ultrastruttura del nucleo trigeminale mesencefalico del ratto. Acta Anat (Basilea) 140: 112-119.
  18. Trulsson M (2006) Funzione sensoriale-motoria dei meccanorecettori parodontali umani. J Riabilitazione orale 33: 262-273.
  19. Trulsson M (2007) Codifica della forza da parte dei meccanorecettori parodontali umani durante la masticazione. Arch Oral Biol 52: 357-360.
  20. Trulsson M, Gunne HSJ (1998) Comportamento alimentare e mordente in soggetti umani privi di recettori parodontali. J Dent Res 77: 574-582.
  21. Trulsson M, Johansson RS, Olsson KA (1992) Sensibilità direzionale degli afferenti meccanorecettivi parodontali umani alle forze applicate ai denti. J Physiol 447: 373-389.
  22. Rokx JT, Juch PJ, Van Willigen JD (1986) Disposizione e connessioni dei neuroni trigeminali mesencefalici nel ratto. Acta Anat (Basilea) 127: 7-15.
  23. Matsushita M, Okado N, Ikeda M, Hosoya Y (1981) Proiezioni discendenti dai nuclei spinali e mesencefalici del nervo trigemino al midollo spinale nel gatto. Uno studio con la tecnica della perossidasi di rafano. J Comp Neurol 196: 173-187.
  24. Sirkin DW, Feng AS (1987) Studio autoradiografico delle vie discendenti dalla formazione reticolare pontina e dal nucleo trigeminale mesencefalico nel ratto. J Comp Neurol 256: 483-493.
  25. Nieuwenhuys R, Voogd JD, Van Huijzen C (2008) Il sistema nervoso centrale umano. Springer.
  26. Matesz C (1981) Distribuzione periferica e centrale delle fibre della radice trigeminale mesencefalica nel ratto. Neurosci Lett 27: 13-17.
  27. Kolta A, Westberg KG, Lund JP (2000) Identificazione di interneuroni del tronco cerebrale proiettati al nucleo motorio trigeminale e strutture adiacenti nel coniglio. J Chem Neuroanat 19: 175-195.
  28. Hayar A, Poulter MO, Pelkey K, Feltz P, Marshall KC (1997) Risposte mesencefaliche del neurone trigeminale all’acido gamma-aminobutirrico. Cervello Res 753: 120-127.
  29. Meier-Koll A (1979) Interazioni dei ritmi endogeni durante lo sviluppo postnatale. Osservazioni di comportamento e studi poligrafici in un bambino normale. Int J Chronobiol 6: 179-189.
  30. Kinney HC, Cryan JB, Haynes RL, Paterson DS, Haas EA, et al. (2015) Anomalie del giro dentato nella morte improvvisa inspiegabile nei neonati: marker morfologico della vulnerabilità cerebrale sottostante. Acta Neuropatolo 129: 65-80.
  31. Ishii T, Suenaga R, Iwata W, Miyata R, Fujikawa R, et al. (2010) Le lesioni bilaterali del nucleo sensoriale del trigemino mesencefalico stimolano la neurogenesi ippocampale ma portano a gravi deficit nel ripristino della memoria spaziale. Cervello Res 1342: 74-84.
  32. Lopez J, Roffwarg HP, Dreher A, Bissette G, Karolewicz B, et al. (2008) Il movimento rapido degli occhi la privazione del sonno diminuisce la stabilità del potenziamento a lungo termine e colpisce alcune proteine di segnalazione glutammatergiche durante lo sviluppo dell’ippocampo. Neuroscienze 153: 44-53.

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